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   <dc:title>Papel del inmunogen isg15 de lubina (Dicentrarchus labrax) en las infecciones por betanodavirus</dc:title>
   <dc:creator>Moreno, Patricia</dc:creator>
   <dc:creator>García-Rosado, Esther</dc:creator>
   <dc:creator>Borrego-García, Juan José</dc:creator>
   <dc:creator>Alonso-Sánchez, María del Carmen</dc:creator>
   <dc:subject>Fauna marina</dc:subject>
   <dcterms:abstract>En peces, al igual que en vertebrados superiores, la respuesta antiviral innata está mediada por el sistema interferón tipo I (IFN I), que actúa mediante la activación de genes denominados isg (interferon-stimulated genes), entre los que se incluye el gen isg15. La proteína codificada por este gen, denominada ISG15, presenta actividad antiviral actuando como citoquina, o mediante un mecanismo denominado ISGilación, que consiste en su unión covalente a proteínas víricas o celulares.&#xd;
Entre las enfermedades de etiología viral que afectan a la lubina (Dicentrarchus labrax), destaca la necrosis nerviosa viral, causada por el virus de la necrosis nerviosa (NNV, género Betanodavirus), que presenta dos segmentos de ARN monocatenario de polaridad positiva: ARN1 (polimerasa viral) y ARN2 (proteína de la cápside). Las diferencias en la secuencia de la región variable T4 del segmento ARN2 permiten su clasificación en 4 genotipos, siendo el genotipo RGNNV el único asociado a episodios de elevada mortalidad en lubina.&#xd;
El presente estudio contribuye a ampliar el conocimiento del papel del sistema IFN I en lubina frente a infecciones por betanodavirus, describiéndose la estructura del gen isg15, analizando su transcripción en respuesta a poli I:C y RGNNV; y evaluando su actividad in vitro.&#xd;
La lubina presenta un gen isg15, compuesto por dos exones y un intrón localizado en la región 5’-UTR. El ORF, de 474 pb, codifica una proteína de 157 aminoácidos constituida por dos dominios tipo ubiquitina y un motivo RLRGG en el extremo carboxilo terminal. La clonación del ORF en el plásmido pcDNA His/Max, y su posterior transfección en la línea celular E-11, ha permitido obtener una línea celular estable (DLISG15-E11), en la que se ha demostrado, mediante inmunofluorescencia indirecta, la localización citoplasmática de esta proteína.&#xd;
El análisis de transcripción muestra una respuesta más temprana e intensa tras la inducción por poli I:C que por RGNNV. Poli I:C estimula la expresión génica desde las 4 hasta las 24 h post-inyección (p.i.) en ambos órganos, y con una cinética similar. Sin embargo, ambos órganos difieren en el nivel de transcripción del gen tras la infección por RGNNV, produciéndose una estimulación temprana, desde las 12 h p.i., y de mayor nivel en el cerebro que en el riñón cefálico, órgano en el que la expresión comienza a las 72 h p.i.&#xd;
La actividad antiviral se ha evaluado mediante el análisis comparativo de la replicación de RGNNV, determinada mediante PCR cuantitativa, en células DLISG15-E11 y células control no transfectadas, no observándose diferencias significativas. Sin embargo, ISG15 podría actuar a otro nivel del ciclo de multiplicación viral, por lo que se están realizando ensayos de rendimiento vírico extracelular mediante titulación, y de ISGilación mediante Western-blot.&#xd;
El hecho de que el cerebro sea el principal órgano diana para la multiplicación de betanodavirus, y el papel antiviral atribuido a la ISG15, junto con los resultados obtenidos, contribuyen a dilucidar la importancia de este gen frente a las infecciones por RGNNV en lubina, incrementándose el conocimiento del papel del sistema del IFN I en la defensa frente a las infecciones vírcas y la relación patógeno-hospedador.</dcterms:abstract>
   <dcterms:dateAccepted>2016-07-28T08:35:08Z</dcterms:dateAccepted>
   <dcterms:available>2016-07-28T08:35:08Z</dcterms:available>
   <dcterms:created>2016-07-28T08:35:08Z</dcterms:created>
   <dcterms:issued>2016</dcterms:issued>
   <dc:type>conference output</dc:type>
   <dc:identifier>Actas del XI Congreso de Microbiología del Medio Acuático. Eds. J. Méndez, D. Cascales, A.I. García-Torrico y J.A. Guijarro. 20-22 de Julio de 2016, Universidad de Oviedo.</dc:identifier>
   <dc:identifier>http://hdl.handle.net/10630/11906</dc:identifier>
   <dc:language>spa</dc:language>
   <dc:relation>XI Congreso de Microbiología del Medio Acuático, SEM</dc:relation>
   <dc:relation>Oviedo</dc:relation>
   <dc:relation>Julio 2016</dc:relation>
   <dc:rights>open access</dc:rights>
   <dc:rights>by-nc-nd</dc:rights>
   <dc:publisher>Universidad de Oviedo</dc:publisher>
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